Deteksi Red Sea Bream Iridovirus (RSIV) dengan Teknik PCR pada Benih Ikan Gurame (Osphronemus gouramy) di Stasiun KIPM Yogyakarta
Keywords:
Ikan gurame; red sea bream iridovirus (RSIV); PCR; Stasiun KIPM.Abstract
Kebutuhan benih gurame semakin meningkat sejalan dengan pengembangan usaha budidaya gurame yang semakin luas. Hal tersebut berdampak pada peningkatan lalulintas perdagangan benih gurame dan Stasiun KIPM adalah lembaga yang berwenang untuk melakukan pengawasan serta pencegahan apabila terdapat HPI/HPIK. Red sea bream iridovirus (RSIV) merupakan salah satu agen penyakit dari golongan virus yang menyebabkan kematian massal pada budidaya benih gurame. Tujuan dari penelitian ini adalah untuk mendeteksi RSIV pada benih gurame dengan teknik PCR. Metode deteksi menggunakan tahapan molekuler yang mengacu pada metode The Office International des Epizooties (OIE). Amplifikasi DNA virus menggunakan primer spesifik RSIV yaitu primer forward 1F (5’-CTCAACACTCTGGCTCATC-3’) dan primer reverse 1R (5’-GCACCAACACATCTCCTATC-3’) dengan amplikon yang dihasilkan sebesar 570 bp. Produk PCR divisualisasi dengan elektroforesis gel agarose 1%. Hasil penelitian menunjukkan bahwa ketiga sampel benih gurame negatif RSIV. Hal ini ditandai dengan tidak terbentuknya pita DNA pada gel elektroforesis, sehingga benih gurame tersebut aman jika dilalulintaskan.
References
Kusbiyanto, Nuryanto A, Soedibja PHT. Deteksi gen major histocompatibility complex class II pada yuwana gurami sowang, Osphronemus goramy Lacepede, 1801 asal satu pemijahan. Jurnal Iktiologi Indonesia. 2016; 16(3):279–88.
Lucas WGF, Kalesaran OJ, Lumenta C. Pertumbuhan dan kelangsungan hidup larva gurami (Osphronemus gouramy) dengan pemberian beberapa jenis pakan. Jurnal Budidaya Perairan. 2015; 3(2):19–28.
Prasetyo AD, Marmaini, Fitriyanti R. Uji toksisitas ginseng kiyapi pada benih ikan gurami (Osphronemus goramy LAC). Jurnal Ilmu-ilmu Perikanan dan Budidaya Perairan. 2017; 12(2):1–5.
Jancovich J., Chinchar V., Hyatt A, Miyazaki T, Williams T, Zhang Q. Family Iridoviridae. In: Virus Taxonomy Ninth Report of the International Committee on Taxonomy of Viruses. 2012. p. 193–210.
Kurita J, Nakajima K. Megalocytiviruses. Viruses. 2012; 4:521–38.
Ito T, Yoshiura Y, Kamaishi T, Yoshida K, Nakajima K. Prevalence of red sea bream iridovirus among organs of Japanese amberjack (Seriola quinqueradiata) exposed to cultured red sea bream iridovirus. Journal of General Virology. 2013; 94:2094–101.
Ma’mun F, Imanudin K, Untari T. Identification of iridovirus based on molecular and imunohistochemistry studies on the grouper fish (Epinephelus sp.) in Lombok, Indonesia. Research Journal of Agriculture and Environmental Management. 2018; 7(2):18–22.
Kumar V, Barman D, Kumar A. Immunoserological and molecular techniques used in fish disease diagnosis- A mini review. International Journal of Fisheries and Aquatic Studies. 2014; 1(3):111–7.
Miller M, Sabrautzki S, Beyerlein A, Brielmeier M. Combining fish and environmental PCR for diagnostics of diseased laboratory zebrafish in recirculating systems. PLoS One. 2019; 14(9):4–12.
OIE. Red sea bream iridoviral disease. In: Manual of Diagnostic Tests for Aquatic Animals. 2009. p. 251–61.
Sivasankar P. A review on DNA viral diseases of fish. International Journal of Fisheries and Aquatic Studies. 2017; 5(4):443–50.
Dey P. Polymerase chain reaction: principle, technique and applications in pathology. In: Basic and Advanced Laboratory Techniques in Histopathology and Cytology. 2018. p. 201–11.
Downloads
Published
How to Cite
Issue
Section
License
Copyright (c) 2020 Hamiyawati Qoimatu Dini Alfaruqi, Sutopo Aris Wibowo, Annisa Khumaira
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.
